Paski testowe do analizy moczu URS16A

Przeznaczenie:

Stosowany do jakościowego lub półilościowego wykrywania Leukocyty, azotyn, bilirubina, białko, pH, krew, ciężar właściwy, ketony, urobilinogen, glukoza, magnez i chlorki w roztworze moczu psów, kotów, królików, koni, krów, owiec, świń, szczurów i innych zwierząt.

Środki ostrożności:

1. Przed użyciem należy uważnie przeczytać instrukcję.

2. Przechowywać w suchym i chłodnym miejscu, z dala od bezpośredniego światła słonecznego.

3. Użyj pasków testowych natychmiast po ich otwarciu.

4. Po wyjęciu pasków szczelnie zamknij butelkę.

5. Nie wyjmuj środka pochłaniającego wilgoć. Nie dotykaj wkładów.

6. Tylko do jednorazowego użytku.

7. Odczytaj wynik pod dobrym światłem.

8. Narażenie na działanie substancji lotnych (kwasów, zasad, rozpuszczalników organicznych, węgla itp.) lub stosowanie grzejników naftowych lub węglowych w środowisku testowym może mieć wpływ na dokładność wyników.

9. Jeżeli istnieją wątpliwości co do wyników testu lub nie są one zgodne z oczekiwanymi, należy sprawdzić, czy paski odczynnikowe do analizy moczu nie przekroczyły terminu ważności i użyć do testu płynu kontroli jakości.

10. W przypadku obchodzenia się z paskami odczynników do badania moczu należy zapoznać się z metodami postępowania z materiałami biologicznymi obowiązującymi w laboratorium.

Przykładowe wymagania:

1. Zbierz świeży mocz do czystego i suchego pojemnika, nie wiruj i nie dodawaj środków konserwujących.

2. Przed badaniem dokładnie wymieszaj mocz.

3. W temperaturze 22–28°C mocz należy zbadać w ciągu 2 godzin bez wpływu na wyniki testu. 4. Jeśli próbki nie można zbadać w ciągu 2 godzin od pobrania, można ją schłodzić i przechowywać w temperaturze 2–8°C. Glukozę, leukocyty, krew i kreatyninę można schłodzić i przechowywać w temperaturze 2–8°C przez ponad 6 godzin, co spowoduje niedokładne wyniki testu; Ketony i kwas askorbinowy to dwa składniki, które należy przechowywać w chłodni w temperaturze 2–8°C przez ponad 4 godziny, a wyniki testu są podatne na niedokładne wartości pomiaru; Urobilinogen i bilirubina są podatne na niedokładne pomiary, gdy są przechowywane w chłodni w temperaturze 2–8°C przez ponad 2 godziny.

Zasada testu: 

1.Leukocyty:Wykorzystywana jest metoda esterazy leukocytarnej. Cytoplazma neutrofili zawiera specyficzną esterazę, która może oddziaływać na blok odczynnika estru kwasu indolooctowego, wytwarzając indolofenol. Ten ostatni, w reakcji z substancjami barwiącymi, tworzy fioletowy kondensat, którego intensywność jest proporcjonalna do liczby komórek.

2.Azotyn: reakcja polega na redukcji azotanów do azotynów przez bakterie Gram-ujemne w moczu. Azotyn może tworzyć czerwone związki z chlorowodorkiem N,N-dietylo-p-fenylenodiaminy.

3.UrobilinogenZgodnie z zasadą metody wiązania azo, urobilinogen jest sprzęgany ze stałą niebieską solą B w silnie kwaśnych warunkach, tworząc barwnik koszenilowy.

4.Białko:opiera się na zasadzie metody błędu związanego z barwnikiem białkowym. Białka wiążą się z barwnikiem, tworząc kompleks, który powoduje zmianę koloru, zwłaszcza w przypadku albuminy, która jest bardziej wrażliwa na reakcję niż globulina, hemoglobina, białko benzoesowe i mucyna.

5.pH:Metoda wskaźnika kwasowo-zasadowego, która pozwala na określenie wartości pH w zakresie od 5,0 do 8,5 przy pomocy wskaźnika pH.

6.Krew:Wykorzystywana jest metoda peroksydazowa. Hemoglobina zawiera grupy hemowe o aktywności podobnej do peroksydazy, które mogą dehydrogenować tetrametylobenzydynę, bezbarwne źródło koloru w bloku odczynników pasków testowych, do związków barwnych, a odcień koloru jest proporcjonalny do liczby czerwonych krwinek.

7.Środek ciężkości: wykorzystując metodę polielektrolitów, zasadę wymiany jonowej między elektrolitami i polielektrolitami w moczu. W obecności kationów, jony wodorowe polielektrolitu są uwalniane w procesie wymiany, powodując zmianę koloru wskaźnika błękitu bromotymolowego, z niebieskiego, przez niebieskozielony, aż do żółtego.

8.Kwas askorbinowy: Zastosowano metodę redukcji. Witamina C ma grupę redukującą l,2-en-diol, która w środowisku kwaśnym może redukować utleniony różowy barwnik 2,6-dichloroindofenol do bezbarwnej 2,6-dichloro-di-p-fenoloaminy.

9.Keton:Wykorzystano metodę nitrozowo-żelazowo-wanidku sodu. Blok odczynnika zawiera głównie nitrozowo-żelazocyjanek sodu, który może reagować z kwasem acetooctowym w moczu w środowisku alkalicznym, tworząc fioletowo-czerwony związek.

10.BilirubinaZgodnie z zasadą metody sprzęgania azo. W środowisku silnego kwasu 2,4-dichloroanilina reaguje specyficznie z bilirubiną, wytwarzając różne kolory odpowiadające stężeniu bilirubiny.

11.Glukoza:Wykorzystano metodę oksydazy glukozowej. Oksydaza glukozowa w bloku odczynnikowym działa na glukozę w moczu, tworząc kwas glukuronowy i nadtlenek wodoru. Pod wpływem katalizy peroksydazy źródło barwnika ulega utlenieniu, tworząc związki barwne.

12.Mikroalbumina:Zgodnie z zasadą metody błędu związanego z barwnikiem, mikroalbumina wiąże się z białkiem, tworząc kompleks, który powoduje zmianę koloru i jest wrażliwa na albuminę.

13.Kreatynina:kreatynina i kwas 3,5-dinitrobenzoesowy tworzą kompleks, zmiana koloru reakcji waha się od żółtego do zielonego, a zmiana koloru jest proporcjonalna do

ilość kreatyniny.

14.Wapń:Kompleks ftaliny z o-krezoloftaleiną powstaje w wyniku kompleksowania jonów wapnia z o-krezoloftaleiną, a odcień barwy jest wprost proporcjonalny do stężenia jonów wapnia.

15.MagnezJony magnezu reagują ze wskaźnikami wapniowo-magnezowymi, tworząc fioletowy kompleks, a głębia koloru jest proporcjonalna do zawartości jonów magnezu. Należy dodać odpowiednie środki maskujące, aby wyeliminować zakłócenia ze strony jonów wapnia.

16.Chlorki:Chlorki tworzą osady z azotanem srebra, a nadmiar azotanu srebra reaguje z chromianami, tworząc czerwone związki.

Ograniczenia:

1. Wyników pasków testowych do analizy moczu nie można traktować jako jedynej podstawy diagnostycznej chorób.

2. Produkt ten może być stosowany wyłącznie do badania próbek moczu. Nie można go stosować do badania próbek innych płynów ustrojowych.

3. Granica wykrywalności zależy od kilku czynników: zmienności rozpoznawania kolorów, ciężaru właściwego, wartości pH i zmian warunków oświetleniowych podczas kontroli wizualnej.

4. Wyniki testów tego produktu są półilościowe. Najwyższe stężenie w każdym pojedynczym przedmiocie zmierzone tym produktem prawdopodobnie będzie większe niż stężenie w próbce. Zaleca się rozcieńczenie próbki czystą wodą przed testem.

5. Z uwagi na zmienność próbek moczu i wyników odczytów, występują pewne odchylenia pomiędzy wartościami wykrytych analitów a wartościami rzeczywistymi.

Jilin Test Bio-Electron Co., Ltd.